1Bálint Erzsébet és 2Várkonyi Zoltán
1JATE Optikai és Kvantumelektronikai Tanszék, 6720 Szeged, Dóm tér 9.
2JATE Biofizikai Tanszék, 6722 Szeged, Egyetem u. 2.
A sejtmembrán tulajdonságainak megismerésére irányuló vizsgálatok elsősorban a membránoknak a sejfolyamatokban betöltött nagy fontossága miatt központi helyet foglalnak el a sejtbiológiában és a molekuláris biológiában. A kapott eredmények azonban annak megértéséhez is közelebb visznek, hogy milyen változások vezetnek abnormális sejtek (beleértve a rákos sejteket) kialakulásához, valamint ahhoz, hogy a különféle gyógyszerek milyen hatásmechanizmus alapján működnek.
A sejtmembrán lipid kettősrétegében mozaikszerűen elhelyezkedő fehérje molekulák, esetenként oligoszacharidokkal glikoproteineket képeznek és speciális funkciót látnak el (pl. antigének, receptorok, ioncsatornák stb.). A hormonok, interferonok, interleukinok, stb. általában nem lépnek be a sejt belsejébe, amelyre hatásukat kifejtik, hanem a sejtmembránban elhelyezkedő specifikus receptorokhoz való kötődés után, jelátvivő folyamatokon keresztül közlik információjukat a sejttel. A biológiai kommunikációnak ez a formája első lépésként membránszinten indul, a folyamatot elindító molekula (elsődleges hírvivő) a megfelelő receptoron keresztül továbbítja az információt a másodlagos hírvivőhöz (messengerhez), amely biokémiai folyamatok láncolatát indítja el a sejtben. A jelátvivő folyamat során megváltozhat a sejtmembrán permeabilitása, eltolódhatnak az intracelluláris ionkoncentrációk, változhat a membránfehérjék kölcsönhatása, egymáshoz képesti elhelyezkedése, a membrán dinamikus tulajdonságai miatt. Ezek a változások jól nyomonkövethetők egy sor biokémiai, fiziko-kémiai módszerrel. Mivel a membránváltozások igen gyorsak, így a nagy időfeloldóképességgel bíró spektroszkópiai módszerek, mint pl. a fluoreszcencia és az ESR spektroszkópia fontos vizsgálati módszerei a területnek. Ezek a módszerek különféle specifikus jelzők membránba való beépítését igénylik. Előállítottak olyan jelzőket, amelyek mesterséges lipidekhez kötötten beépűlnek a membránba, vagy specifikusan kötődnek a receptorokhoz anélkül hogy a vizsgált membránfolyamatokat megváltoztatnák.
Alkalmazott módszerek
Humán sejteken végzett vizsgálataink során az alábbi spektroszkópiai méréseket végeztük el:
1. Fluoreszkáló jelző molekulák segítségével ismeretek szerezhetők a membránok felépítéséről, tulajdonságairól és azok megváltozásairól, beleértve a membrán fluiditását, elektromos tulajdonságait, speciális membránkomponensek elhelyezkedését és mozgását, valamint konformációs változásait.
1.a. Áramlási citométer segítségével, megfelelő fluoreszkáló jelzők alkalmazásával 1 nagyszámú sejt gyors vizsgálata végezhető el. A teljesség igénye nélkül az alábbi igen fontos membránjellemzők mérhetők, zárójelben példaként megadjuk az alkalmazott fluoreszkáló jelző festékeket: a sejfelszíni antigének kifejeződésének mértéke (FITC), a sejtciklus (propidium-jodid), a membránpotenciál (feszültségérzékeny festék pl. oxonol), a Ca2+-ionkoncentráció változása (Fluo3), stb.
1.b. Fluoreszcencia polarizációs módszerrel, difenil-dexatrién (DPH) jelző festék alkalmazásával meghatározható a lipidek mozgása és orientációja, a membrán mikroviszkozitása. A lumineszcencia polarizációs fokának méréséből kiegészítve további lumineszcencia jellemzők (fluoreszcencia szinkép, hatásfok stb.) meghatározásával a molekulaszerkezetről, a membránalkotók közötti gerjesztési energia vándorlásáról és a küzöttük levő távolságokról kaphatunk fontos információt.
2. Egyedi sejteken lézermikroszkóp segítségével FRAP 2 (Fluorescence Recovery After Photobleaching) módszerrel végezhetők vizsgálatok. Meghatároztározható a membránok fehérje és lipid komponenseinek laterális diffúziós állandója, a sejtek közötti kommunikáció, a sejt pH-ja, stb.
3. ESR spektroszkópiai mérésekkel nitroxil és maleimid spinjelzők alkalmazásával 3 a membrán fluiditásáról információt adó S rendezettségi paraméter határoztó meg.
Az elvégzett vizsgálatok
Mint ismeretes az interferonok (IFN-, , ) sejtek által vírusfertőzés hatására szintetizált fehérjék, vírusellenes, sejtosztódást gátló, immunrendszert befolyásoló tulajdonságokkal, amelyek a szervezet védekező rendszere szempontjából igen fontosak, továbbá bizonyos rosszindulatú daganatos megbetegedések, leukémiák, vírusfertőzések (pl. hepatitis C) esetén gyógyszerként is alkalmazzák.
Az ismertetett spektroszkópiai módszereket az -IFN (leukocita interferon) sejtosztódást gátló hatásának kialakulásához vezető jelátviteli mechanizmus korai lépéseinek tanulmányozásához használtuk fel. A vizsgálatokat sejtszuszpenzióban nevelt Burkitt limfómából származó Daudi sejtek interferon szenzitivitásban lényegesen különböző klónjain és U937 monocita sejteken végeztük.
A sejtmembrán dinamikai és elektromos tulajdonságainak mérésével a szerkezet és funkció kapcsolatáról kaptunk információt. Vizsgálataink megerősítették, hogy az áramlási citometriás, FRAP és ESR módszerek alkalmasak élősejteken történő a membránban bekövetkező változások vizsgálatára. Kimutattuk továbbá, hogy az interferon jelátvitel során megváltoznak a sejtmembrán dinamikai tulajdonságai, valamint a membránon keresztüli K+ ionfluxus. Az eredmények közelebb visznek különféle gyógyszerek hatásmechanizmusának felderítéséhez is. Vizsgálhatjuk továbbá in vitro körülmények között a terápiák során alkalmazott gyógyszerkombinációk együttes hatását is, mint pl. az -IFN-nal együtt alkalmazott tamoxifen vagy trental okozta membránváltozásokat.
Hivatkozások
[1] Z. Krasznai, T. Márián, L. Balkay, M. Emri, L. Trón: J. Photochem. Photobiol. 28, 93,(1995).
[2] H.M. Shapiro: Cytometry, 1, 301, (1981).
[3] E. Balint, H. Fang, Y. Gan, A. Aszalos, P.M. Grimley: J. Interferon and Cytokine Research 15, 113, (1995).